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宏基因組測(cè)序

目    錄
  • 產(chǎn)品介紹
  • 常見(jiàn)問(wèn)題
  • 經(jīng)典案例
  • 結(jié)果展示

背景簡(jiǎn)介

宏基因組測(cè)序(Metagenomics Sequencing)是對(duì)環(huán)境樣品中的微生物群落的基因組進(jìn)行高通量測(cè)序,主要研究微生物種群結(jié)構(gòu)、基因功能活性、微生物之間的相互協(xié)作關(guān)系以及微生物與環(huán)境之間的關(guān)系。宏基因組測(cè)序研究擺脫了微生物分離純培養(yǎng)的限制,擴(kuò)展了微生物資源的利用空間,為環(huán)境微生物群落的研究提供了有效工具。

技術(shù)優(yōu)勢(shì)

直接對(duì)特定環(huán)境中全部微生物群體基因組進(jìn)行測(cè)序。
環(huán)境微生物通常以群落方式共存和互作,宏基因組研究比單個(gè)個(gè)體研究更能反映微生物的真實(shí)生存狀態(tài)。
除分析微生物群體多樣性和豐度外,還可以解析微生物基因功能和參與的代謝通路,發(fā)掘新的具有特定功能的基因。

技術(shù)路線

分析內(nèi)容

樣本類型

環(huán)境樣品,總DNA等
建議總DNA起始量:5 μg,最低0.5 μg,濃度≥30 ng/μL(Qubit定量)

Q1:微生物群落研究方法比較?
A:16S rDNA測(cè)序:由于研究對(duì)象只為細(xì)菌的16S rDNA,因此16S測(cè)序技術(shù)更多只用于研究群落物種信息,也就是利用OTU物種分類、α和β多樣性分析等手段解答群落有什么物種,物種關(guān)系是什么等問(wèn)題。因此,這種技術(shù)更多地只能了解到環(huán)境對(duì)微生物的組成有何影響,更偏向于單向關(guān)系研究。
宏基因組測(cè)序:宏基因組的研究對(duì)象為群落所有DNA,因此研究范圍更廣。理論上不單只可以了解群落的組成和多樣性等物種信息,同時(shí),利用基因的注釋信息,還可以挖掘群落的核心功能和通路信息,在基因組層面了解這個(gè)群落到底有什么物種,這些物種能夠發(fā)揮什么功能。只有了解群落功能,才能知道它們對(duì)環(huán)境有什么影響,這有利于進(jìn)行微生物與環(huán)境的雙向研究。

Q2:宏基因組測(cè)序原理?
A:將基因組DNA隨機(jī)打斷成若干條500bp左右的小片段(類似于拼圖中的單個(gè)形狀不一的模塊),然后連接接頭,在片段兩端加通用引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增測(cè)序。將reads進(jìn)行組裝拼接(類似于將眾多模塊拼成一副完整圖片),得到基因序列,眾多基因構(gòu)成完整的基因集。同時(shí)將獲得的reads片段或組裝好的基因序列與NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行比對(duì),得到物種注釋結(jié)果。
Q3:土壤樣本準(zhǔn)備注意事項(xiàng)?
A:取土壤表層樣品(0~20 cm ),除去石塊和植物殘根等雜物,放入無(wú)菌封口袋中,立即置于冰盒 (建議使用干冰,以利更好地保持微生物原貌)中運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室 ,馬上進(jìn)行 DNA抽提。DNA 可置于 -20 ℃保存,長(zhǎng)期保存建議置于 -80℃存放。 如無(wú)法進(jìn)行DNA抽提,請(qǐng)盡快將樣本置于液氮中冷凍4小時(shí)以上,再轉(zhuǎn)移至-80℃保存 。
如采集根際土壤,拔取植株后,需抖落植株根部的大塊松散土壤,用已消毒的軟毛刷下附著在植物根際的土壤,放入無(wú)菌封口袋中,立即置于冰盒中運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室 ,馬上進(jìn)行DNA抽提。

Q4:水體樣品準(zhǔn)備注意事項(xiàng)?
A:使用采水器采集水樣(建議1~2 L),置于冰盒(建議使用干冰,以利更好地保持微生物原貌)中運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室,立即用無(wú)菌的0.22 μm醋酸纖維濾膜抽濾水樣(若水體渾濁,可使用無(wú)菌的大孔膜預(yù)濾后再使用 0.22 μm 濾膜;如 1張 0.22 μm濾膜無(wú)法收集全部菌體,可使用多張濾膜 ), 取出濾膜后馬上進(jìn)行樣品DNA抽提。 DNA可置于-20 ℃保存,長(zhǎng)期保存建議置于-80℃存放 。如無(wú)法進(jìn)行DNA抽提,請(qǐng)盡快將樣本置于液氮中冷凍 4小時(shí)以上,再轉(zhuǎn)移至-80℃保存 。

Q5:糞便樣本準(zhǔn)備注意事項(xiàng)?
A:采集新鮮糞便樣品并迅速置于無(wú)菌離心管中 ,置于冰盒(建議使用干冰,以利更好地(建議使用干冰,以利更好地保持微生物原貌)中運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室,馬上進(jìn)行DNA抽提。DNA可置于-20 ℃保存,長(zhǎng)期保存建議置于-80℃存放。如無(wú)法進(jìn)行DNA抽提,請(qǐng)盡快將樣本置于液氮中冷凍4小時(shí)以上,再轉(zhuǎn)移至-80℃保存 。

宏基因組測(cè)序研究廢水處理過(guò)程中淤泥微生物抗性基因及移動(dòng)元件


本文利用16S、宏基因組等技術(shù)研究在升溫厭氧消化處理污水的0d-57d天內(nèi),淤泥中抗性基因、移動(dòng)元件以及抗性基因宿主微生物的變化。在0d時(shí),共發(fā)現(xiàn)13類抗性基因(Antibiotic Resistance Genes, ARG),其中9種含量都超過(guò)1ppm,ARG 總量從125.97ppm(0d)降低至50.65ppm(57d),其中氯霉素抗性基因、多耐藥性抗性基因等抗性基因降低多達(dá)50%以上。高溫處理后,移動(dòng)元件總量由528.73ppm降低至391.36ppm。
本文研究表明,在消化處理淤泥過(guò)程中,隨溫度升高,會(huì)明顯降低淤泥中的抗性基因、移動(dòng)基因組元件以及抗性基因宿主微生物的含量,其中抗性基因的降低可能是與移動(dòng)元件以及宿主微生物的降低有關(guān),因此高溫厭氧消化處理城市廢水污泥能夠有效的抑制抗性基因擴(kuò)散到環(huán)境中。

參考文獻(xiàn)
Tian Z, Zhang Y, Yu B, et al. Changes of resistome, mobilome and potential hosts of antibiotic resistance genes during the transformation of anaerobic digestion from mesophilic to thermophilic.[J]. Water Research, 2016, 98:261.

樣品聚類分析通過(guò)對(duì)樣品進(jìn)行聚類分析,構(gòu)建聚類樹(shù),可以研究不同樣品之間的相似性。Bray-Curtis 距離是系統(tǒng)聚類法中使用最普遍的一個(gè)距離指標(biāo),它主要用來(lái)刻畫(huà)樣品間的相近程度,它的大小是進(jìn)行樣品分類的主要依據(jù)。根據(jù)各物種在各樣品中的豐度表出發(fā),以Bray-Curtis距離矩陣進(jìn)行樣品間聚類分 析,并將聚類結(jié)果與各樣品的物種相對(duì)豐度整合進(jìn)行展示。

KEGG注釋根據(jù)KEGG注釋總表,可以對(duì)KEGG注釋的總體情況進(jìn)行Unigene數(shù)目的統(tǒng)計(jì).

eggNOG分類統(tǒng)計(jì)圖eggNOG可以分為四個(gè)層次。第一層包括:1.信息存儲(chǔ)和加工;2.細(xì)胞過(guò)程和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo); 3.新陳代謝;4.未確定分類。第二層進(jìn)一步細(xì)分成25個(gè)分類,每一個(gè)分類都可以用一個(gè)字母表示。第三層為共同功能描述(Consensus Functional Description)。第四層為具體的直系同源蛋白簇。將Unigenes與eggNOG庫(kù)的蛋白序列進(jìn)行比對(duì)(blastp,evalue≤1e-5),取分值最高的eggNOG比對(duì)結(jié)果序列(Hits)的注釋作為該Unigene序列的注釋。結(jié)合eggNOG數(shù)據(jù)庫(kù)的層次結(jié)構(gòu),可以統(tǒng)計(jì)出eggNOG各個(gè)層級(jí)或水平的信息。


 CAZy柱狀圖CAZy是一個(gè)特殊的數(shù)據(jù)庫(kù),致力于分析碳水化合物活性酶的基因組,結(jié)構(gòu)和生 信息等。CAZy 數(shù)據(jù)庫(kù)主要涵蓋 6 大功能類:糖苷水解酶,糖基轉(zhuǎn)移酶,多糖裂合酶,碳水化合物酯酶,輔助氧化還 原酶和碳水化合物結(jié)合模塊。6個(gè)功能大類又可以進(jìn)一步分成各功能小類,整個(gè)數(shù)據(jù)庫(kù)具有明顯的兩個(gè)層次的結(jié)構(gòu)。在過(guò)去的幾年里,CAZy分類家族不 斷擴(kuò)展,為基因組和宏基因組的分析提供更完備的數(shù)據(jù)。

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